Stammzellforschung und regenerative Medizin – auf der ISSCR 2022 vorgestellte Technologie und Methoden

Es war ein weiteres großartiges Jahr bei der ISSCR 2022! Führungskräfte aus der ganzen Welt kamen zusammen, um neue Technologien zu diskutieren, Erkenntnisse auszutauschen und die neuesten Durchbrüche in der Stammzellforschung und der regenerativen Medizin zu erforschen. Darüber hinaus lernten die Teilnehmer automatisierte und quantifizierbare Lösungen für die Komplexität von 3D-Zellmodell-Assays kennen.

Falls Sie die Show verpasst haben oder weitere Einzelheiten über die vorgestellten Technologien und Methoden wünschen – wir haben alles für Sie!

Überwachung des Wachstums und der Charakterisierung von Verbindungseffekten in 3D-Darmorganoiden mit High-Content-Imaging

3D-Darmorganoide mit High-Content-Imaging
https://main--moleculardevices--hlxsites.hlx.page/en/assets/scientific-posters/dd/img/monitoring-growth-and-characterization-of-compound-effects-in-3d-intestinal-organoids
Die Komplexität von 3D-Zellmodellen stellt nach wie vor eine Hürde für eine breitere Akzeptanz in der Forschung und dem Wirkstoffscreening dar. In diesem Poster beschreiben wir eine automatisierte, integrierte Zellkultur- und High-Content-Imaging-Lösung, die eine automatisierte Überwachung, Aufrechterhaltung, Charakterisierung von Organoiden und Tests der Auswirkungen verschiedener Verbindungen ermöglicht. Die integrierte Lösung umfasst ein konfokales Imaging-System, einen automatisierten Inkubator, einen Liquid Handler und einen kollaborativen Roboter.

Wir entwickelten Methoden zur Automatisierung der Aussaatzellen in Matrigel und zum Medienaustausch sowie zur Überwachung der Entwicklung von Darmorganoiden von Maus mittels Imaging im Durchlicht. Die auf maschinellem Lernen basierende Bildanalyse ermöglichte die Erkennung von Organoiden und die Beschreibung ihrer Größe und Dichte. Die fortschrittliche Bildanalyse ermöglichte die 3D-Rekonstitution und komplexe phänotypische Evaluierung von Organoidstrukturen, einschließlich der Beschreibung der Größe und Komplexität der Organoide, der Zellmorphologie und -viabilität sowie des Vorhandenseins von Differenzierungsmarkern. Wir demonstrieren die konzentrationsabhängigen Toxizitätseffekte mehrerer Krebsmedikamente.

Wir haben die Komplexität weiter erhöht, indem wir menschliche Darmorganoide in mikrogemusterten Gri3D® U-Boden-förmigen Mikroschälchen im Hydrogel erzeugt haben. Wir demonstrieren die Werkzeuge zur Steigerung des Durchsatzes und der Automatisierung von Organoid-Assays und des Screenings von Verbindungen und schlagen Analyseansätze und Deskriptoren vor, die mehr Informationen über diese komplexen Modelle liefern.

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Strukturelle Organisation und funktionelle Analyse der Antwort von Verbindungen in aus 3D-humanen iPSC gewonnenen kardialen Trikultur-Mikrogeweben

Aus 3D-Human-iPSC gewonnene kardiale Trikultur-Mikrogewebe
https://main--moleculardevices--hlxsites.hlx.page/en/assets/scientific-posters/dd/img/structural-organization-in-3d-human-ipsc-derived-cardiac-tri-culture-microtissues
Das menschliche Herz ist ein komplexes Organ, das die hochgradig regulierten Prozesse des Bluttransports durch den Körper gewährleistet. Der erwachsene menschliche Ventrikel besteht aus Kardiomyozyten, Endothelzellen, Fibroblasten und anderen unterstützenden Zelltypen. Obwohl Kardiomyozyten 75% des Gesamtvolumens des menschlichen Ventrikels ausmachen, machen sie nur 50% der gesamten Zellzahl aus. Jüngste Publikationen zeigen, dass trizelluläre Kokultur-Mikrogewebe von Kardiomyozyten, Endothelzellen und Herzfibroblasten, die alle aus humanem iPSC gewonnen werden, die Reifung und funktionelle Aktivität verbessern.

In dieser Studie verwendeten wir ein Trikulturmodell, das durch das Mischen von aus iPSC gewonnenen Herzzellen mit primären adulten Fibroblasten und aus iPSC gewonnenen Endothelzellen erstellt wurde. Wir verwendeten ein Biomek i7 Liquid Handling System für die Zellplattierung und den anschließenden Medienaustausch. Wir untersuchten die funktionelle Aktivität von Mikrogeweben, indem wir Calcium-Oszillationen mit einem schnellen kinetischen Fluoreszenz-Aufzeichnungsgerät – dem FLIPR® Penta High-Throughput Cellular Screening System – aufzeichneten, während die Wellenformanalyse mit dem ScreenWorks® Peak Pro 2™ Softwaremodul durchgeführt wurde. Darüber hinaus haben wir High-Content-Imaging verwendet, um die Struktur und Morphologie unserer 3D-Mikrogewebe mit dem ImageXpress® Micro Confocal High-Content Imaging Systemzu charakterisieren. Die 3D-Struktur von Mikrogeweben wurde mit der MetaXpress® High-Content Image Acquisition and Analysis Software rekonstruiert und analysiert.

Die hier präsentierten Daten unterstreichen die Nützlichkeit und biologische Relevanz der Verwendung von aus iPSC gewonnenen Zelltypen in 3D-Mikrogeweben als vielversprechendes Modell zur Messung von Verbindungseffekten auf menschlichem Herzgewebe in einem High-Throughput-Format.

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Automatisierte Überwachung der Entwicklung und Analyse der Aktivität von aus iPSC gewonnenen 3D-Gehirn-Organoiden

Aus iPSC gewonnene 3D-Zerebralorganoide
https://main--moleculardevices--hlxsites.hlx.page/en/assets/scientific-posters/dd/img/automated-monitoring-of-development-and-activity-analysis-of-ipsc-derived-3d-cerebral-organoids
Die Kultur komplexer Organoide, wie z. B. zerebraler Organoide, ist eine sich schnell entwickelnde Technologie, die ein immenses Potenzial in den Bereichen Entwicklungsneurobiologie und Neurodegeneration aufweist. Jüngste Fortschritte haben es möglich gemacht, Gehirnorganoide aus iPSCs zu kultivieren, was die Erforschung der kortikalen Entwicklung und der damit verbundenen Erkrankungen ermöglicht. Weitere Arbeiten sind erforderlich, bevor Gehirnorganoide in großem Maßstab für Studien zur funktionellen Genomik, in der Wirkstoffforschung und für die Untersuchung der durch Verbindungen hervorgerufenen Toxizität eingesetzt werden können. Hier beschreiben wir eine Methode zur halbautomatisierten Kultivierung und Überwachung von Gehirnorganoiden sowie zur Untersuchung der funktionellen neuronalen Aktivität durch die Aufzeichnung der Ca2+-Oszillation.

Zerebrale Organoide wurden aus iPSC unter Verwendung zuvor veröffentlichter Methoden entwickelt (Lancaster 2014). Die Methode wurde für einen teilweise automatisierten Arbeitsablauf und die Kulturüberwachung mit dem ImageXpress Confocal HT.ai High-Content Imaging System angewendet. Wir haben die Größe und Morphologie der Entwicklung von Gehirn-Mikrogeweben im Durchlicht über 20 Wochen der Entwicklung hinweg mithilfe einer auf Deep Learning basierenden Bildanalyse (IN Carta® Image Analysis Software) überwacht, um die Größe, Form und Dichte des Gewebes zu bestimmen. Zur Detektion funktioneller Aktivitäten wurden Calcium-Oszillationen aus ausgewählten Clustern der Mikrogewebe mittels Imaging aufgezeichnet und mit MetaXpress High-Content Image Acquisition and Analysis Softwar e für die kinetische Peak-Analyse analysiert.

Die Methode erweist sich als vielversprechend für die Evaluierung der Auswirkungen von pharmazeutischen Wirkstoffen, Toxinen und genetischen Mutationen, während für Screening-Anwendungen eine weitere Methodenentwicklung erforderlich ist.

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Werfen Sie einen Blick darauf, wo unsere Forschung stattfindet!

Besichtigen Sie unser Organoid Innovation Center, in dem wir modernste Instrumente präsentieren, die harmonisch zusammenarbeiten, um das Wachstum und die Überwachung von 2D- und 3D-Lebendzellkulturen mit intelligentem labelfreiem Imaging zu ermöglichen. Dieser integrierte Arbeitsablauf bietet Qualitätskontrollwarnungen und -bereitschaft, 3D-Organoid-Screening und Deep-Learning-Bildanalyse, die verborgene Muster aufdecken, die andere Technologien verpassen.

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